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Microorganismos encontrados en la leche bovina destinada a
alimentar terneros: ¿Puede la pasteurización de leche en el tambo
controlar la transmisión de bacterias?
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Paolicchi, F.1,2; Cipolla, A.1; Verna, A.1.3;
Malena, R.1; Morsella, C.1; Seguro, R.4;
Gonzalez, A.5
1Laboratorio de Bacteriología,
Departamento de Producción Animal, EEA INTA. 2Facultad de
Ciencias Agrarias, UNMdP. CC276, (7620), Balcarce. Bs.As. 3CONICET. 4Asesoramiento Agropecuario "El Prado", Esperanza, Santa Fe. 5Facultad de Veterinaria, UNL, Santa Fe. ARGENTINA.
XIVa. Reunión Anual de la AAVLD (Asociación Argentina de Veterinarios
de Laboratorios de Diagnóstico) 13 al 15 de noviembre de 2002, Villa
Gral. Belgrano, Sierras de Córdoba. |
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e-mail:
fpaolicchi@balcarce.inta.gov.ar
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Click para ver poster completo |
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Introducción
La leche bovina proveniente de los tambos contiene microorganismos cuya presencia es aceptada, siempre que puedan ser posteriormente controlados por la pasteurización
(PT). Bacterias patógenas como Brucella spp,
Mycobacterium spp o Salmonella spp excretadas por la leche de vacas infectadas constituyen un riesgo para la transmisión de enfermedades. La eliminación por PT de estos agentes bacterianos evitaría la infección via oral en los terneros criados en estaca.
Objetivo
Evaluar experimentalmente la eficacia de eliminación y control de bacterias patógenas y no patógenas de la leche bovina recogida en el tambo y sometida a tratamiento por
PT.
Resultados
Las muestras de leche cruda mostraron bajo conteo de microorganismos como
E.coli, S.agalactiae, Coliformes totales y bacterias mesofilas,
Tabla 1, pero fueron negativas a Salmonella sp, Brucella sp o micobacterias patógenas. La PT durante 15" eliminó o redujo la concentración de microorganismos presentes naturalmente y de aquellos inoculados experimentalmente. Además los tratamientos con la misma temperatura pero durante 30" y 60" fueron igualmente efectivos.
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Materiales y Métodos
a) Equipo de pasteurización de leche para
terneros: Régimen de trabajo: 300 litros leche/hora, 72,5ºC de
temperatura.
b) Leche (50 Lts) de un tambo de la zona
(4ºC).
c) Muestras: 200 ml de
1-leche cruda,
2-leche cruda sometida a PT tradicional
72,5ºC/15”,
3-leche cruda post-inoculación (pi) con:
Escherichia coli (3,3x108UFC/ml), Staphyloccocus
aureus (8,8x108UFC/ml), Streptococcus agalactiae
(7,5x107UFC/ml), aislamientos de casos de mastitis bovina,
4-leche cruda inoculada y sometida a PT
72,5ºC/15",
5-leche cruda inoculada y sometida a PT.
72,5ºC/30”.
6-leche cruda inoculada y sometida a PT.
72,5ºC/60”. Los recuentos bacterianos de los inóculos y de la
leche pi se realizaron en duplicado (Miles/Misra), sobre Agar Sangre Columbia.
d)Identificación microbiológica: se aplicaron los siguientes criterios:
*Bacterias mesófilas: medio Plate-Count, siembra en diluciones hasta 10-4, incubándo a 30ºC y 37ºC/48 hs.,
*Coliformes totales y *E.coli: medio
VRB, y *S.aureus medio Baird Parker, diluciones hasta 10-4 e incubación a 37ºC/48 hs.,
*Brucella abortus medio Agar Skirrow, directa por diluciones con ansa e incubación a 37ºC/15 días en jarra con mezcla de
CO2/N2/O2.*Salmonella spp: caldo lactosado, pre-enriquecimiento en tetrationato y posterior en XLD, directa por sub-repique de 1ro, 3ro y 5to días, a 37ºC/6 días.
*Hongos: medio Agar Papa siembra directa por diluciones con ansa, incubación a 21ºC/5 días.
*Micobacterias: medio Herrold-yema-huevo (micobactina, piruvato y antibióticos). Las muestras de leche (n=2) despúes de cada tratamiento fueron observadas diariamente para bacterias de rápido crecimiento y cada 15 días hasta los 4 meses para micobacterias.
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TABLA 1. Muestra A: Leche cruda; Muestra B: Leche
cruda PT 72,5C°x15"; Muestra C: Leche cruda inoculada no
PT; Muestra D: Leche inoculada PT 72,5C°x15"; Muestra
E: Leche inoculada PT 72,5C°x30"; Muestra F: Leche
inoculada PT 72,5C°x60"; (NR: no realizado).
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E.coli |
S.
aureus |
S.
agalactiae |
Colif.
Totales |
Bact.
Mesofilas |
Brucella
sp/
Salmonella sp |
|
Tipo de
Muestra |
°C y
Tiempo
PT |
UFC/ml |
UFC/ml |
UFC/ml |
UFC/ml |
UFC/ml |
UFC/ml |
|
30°
C |
37°C |
|
Muestra
A |
-- |
(+) 75 |
(+) 3 |
NR |
(+) 85 |
4250 |
2250 |
(-) |
|
Muestra
B |
72,5°C/15
”
|
(-) |
(-) |
NR
|
(-) |
435 |
70 |
(-)
|
|
Muestra
C
|
--
|
(+)3,3x108
|
(+)
8,8x108
|
(+)
7,5x107 |
NR
|
NR |
NR |
(-)
|
|
Muestra
D |
72,5°C/15
” |
(-) |
(-) |
(-) |
(-) |
815 |
125 |
(-) |
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Muestra
E |
72,5°C/30
” |
(-) |
(-)
|
(-) |
(-) |
650
|
575 |
(-) |
|
Muestra
F |
72,5°C/60
” |
(-) |
(-) |
(-) |
(-) |
795 |
355 |
(-) |
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Conclusiones
Bajo estas condiciones se podría afirmar que
la PT de la leche por cualquiera de los tratamientos
es adecuada para eliminar o disminuir la carga bacteriana en la
leche destinada al consumo por terneros de tambo. El control de
estos microorganismos en leche destinada a la alimentación de
terneros en guacheras, es de interés para asegurar el consumo con
reducida carga bacteriana. Es posible que bacterias como
B.abortus o micobacterias patógenas que se excretan por la
glándula mamaria de bovinos infectados, puedan ser eliminadas por PT
antes que la leche destinada a la alimentación de los
terneros sea distribuida. El control de bacterias productoras de
mastitis bovina halladas en leche cruda, contribuiría a disminuir
la prevalencia de infecciones mamarias que suelen expresarse en las
terneras criadas en estaca y que se alimentan de leche con alta
carga bacteriana.
Bibliografía
1) Calvinho,L. 1999. Análisis de leche de tanque de frío. Actas de X Jornadas de Salud Animal, Esperanza Santa Fe. pp 1-6. |
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